sábado, 16 de marzo de 2019

Frotis sanguíneo

PRÁCTICA Nº 16                 FROTIS SANGUÍNEO 

Objetivo 

  • Observación e identificación de las células sanguíneas. 
  • Manejo del microscopio. 
  • Técnicas de tinción. 


Material  

  • Microscopio 
  • Portas y cubre-objetos 
  • Lanceta estéril 
  • Alcohol 
  • Azul de metileno 
  • Sangre 


Protocolo 

1. Limpiar el pulpejo del dedo con una gota de alcohol, hacer una punción para conseguir una gota de sangre.
2. Depositar la gota de sangre, en un lado y en el centro de un porta bien limpio.
3. Seguidamente, con el empleo de un porta de borde esmerilado se hace un frotis o extensión de sangre. 
***El porta con el que se hace la extensión debe deslizarse bien colocado y lo más perfectamente aplicado en su borde contra el otro porta sobre el que se hace la extensión. Sólo debe pasarse una vez, de forma continua e ininterrumpida.


Es conveniente realizar dos o tres extensiones, con el fin de seleccionar para la tinción la mejor lograda.  Las extensiones o frotis deben se facilita con movimiento en forma de abanico, nunca sopl desecación evita la deformación de los glóbulos sanguíneos. Técnica de la Tinción.:
1. Depositar el porta con la extensión de sangre encima del la cubeta.
2. Dejar caer sobre la extensión unas gotas de con lo que se consigue el
3. Depositar cubriendo toda la extensión, unas desecación) y dejar actuar el colorante unos
4. Lavar la preparación, hasta que arrastre todo el colorante.
5. Tomando el porta por los cantos secar aireando el porta, o bien al calor muy lento de la llama del mechero.
6. Colocar cubre.

Observación al Microscopio:
1. Con débil aumento explorar la preparación para l perfecto. Los lugares más aptos son aquellos en los que la extensión de los glóbulos se ha conseguido en una sola capa, están bien teñidos y no se han producido precipitados de los colorantes. Cuando se observe u
2. En el campo del microscopio, se verán con un dominio predominante los hematíes o eritrocitos , teñidos en color rojo. No tienen núcleo y son más delgados por el centro que por los bordes. Los la presencia de núcleo. Hay varias clases de glóbulos blancos:
o los linfocitos algo mayores que los glóbulos rojos, con un núcleo muy voluminoso que ocupa casi todo el glóbulo
o los monocitos son los leucocitos mayores, poco frecuentes normalmente, hay que desplazarse por la preparación para encontrar alguno. Tienen un núcleo muy grande y redondeado

Es conveniente realizar dos o tres extensiones, con el fin de seleccionar para la tinción la
Las extensiones o frotis deben secarse al aire lo más rápidamente posible. La desecación se facilita con movimiento en forma de abanico, nunca soplando o por calor. La rápida desecación evita la deformación de los glóbulos sanguíneos.
sitar el porta con la extensión de sangre encima del soporte de tinciones
Dejar caer sobre la extensión unas gotas de metanol y esperar que el alcohol se evapore, con lo que se consigue el fijado.
Depositar cubriendo toda la extensión, unas gotas de Azul de Metileno y dejar actuar el colorante unos 2 minutos.
Lavar la preparación, hasta que arrastre todo el colorante.
Tomando el porta por los cantos secar aireando el porta, o bien al calor muy lento de la
ón al Microscopio:
Con débil aumento explorar la preparación para localizar la zona en la que el frotis es más perfecto. Los lugares más aptos son aquellos en los que la extensión de los glóbulos se ha conseguido en una sola capa, están bien teñidos y no se han producido precipitados de los colorantes. Cuando se observe una zona apta, pasar a aumentos más fuertes.
En el campo del microscopio, se verán con un dominio predominante los , teñidos en color rojo. No tienen núcleo y son más delgados por el centro que por los bordes. Los glóbulos blancos o leucocitos de identifican fácilmente por la presencia de núcleo. Hay varias clases de glóbulos blancos:
algo mayores que los glóbulos rojos, con un núcleo muy voluminoso que ocupa casi todo el glóbulo.
son los leucocitos mayores, poco frecuentes normalmente, hay que desplazarse por la preparación para encontrar alguno. Tienen un núcleo muy grande y redondeado. (Recordar que  su función es la de fagocitosis).

Es conveniente realizar dos o tres extensiones, con el fin de seleccionar para la tinción la
lo más rápidamente posible. La desecación ando o por calor. La rápida
soporte de tinciones y éste sobre
y esperar que el alcohol se evapore,
zul de Metileno, (evitar la
Tomando el porta por los cantos secar aireando el porta, o bien al calor muy lento de la
ocalizar la zona en la que el frotis es más perfecto. Los lugares más aptos son aquellos en los que la extensión de los glóbulos se ha conseguido en una sola capa, están bien teñidos y no se han producido precipitados de los na zona apta, pasar a aumentos más fuertes.
En el campo del microscopio, se verán con un dominio predominante los glóbulos rojos, , teñidos en color rojo. No tienen núcleo y son más delgados por el de identifican fácilmente por
algo mayores que los glóbulos rojos, con un núcleo muy voluminoso
son los leucocitos mayores, poco frecuentes normalmente, hay que desplazarse por la preparación para encontrar alguno. Tienen un núcleo muy es la de fagocitosis).

o los polinucleares presentan el núcleo como fragmentado o con aspecto arrosariado.
o los eosinófilos, con granulaciones abundantes de color rojizo y el núcleo teñido de color azul marino. Estos glóbulos aumentan su número en caso de parasitosis o procesos alérgicos.
o los basófilos presentan un núcleo teñido y  granulaciones en el  citoplasma.
o Las plaquetas aparecen como pequeños fragmentos teñidas. Estas células intervienen en el proceso de coagulación sanguínea.

3. El número promedio de glóbulos rojos en el hombre es de 5.000.000 por mm3 de sangre. La cifra media de glóbulos blancos es de 7.000 a 8.000 por mm3. Hay por tanto un glóbulo blanco por cada 600 ó 700 glóbulos rojos. Por lo tanto para ver todos los tipos de glóbulos blancos debes buscarlos en distintos campos de la preparación. El número de plaquetas es de unas 250,000 por mm3

Observación de estructuras fúngicas con azul de lactofenol


PRÁCTICA Nº 14                             
OBSERVACIÓN ESTRUCTURAS FÚNGICAS CON AZUL DE LACTOFENOL

Fundamento teórico

La tinción de Azul de lactofenol se emplea para observar hongos.
Es una tinción simple (un sólo colorante) y como tal está basada en la afinidad del colorante por componentes de las células, en este caso por las estructuras fúngicas.
El azul de lactofenol tiene tres características que lo hacen especial para observar dichas estructuras en los hongos del tipo moho obtenidos en los cultivos por aislamiento.
                El fenol destruye la flora acompañante (algunas veces en los cultivos, juntos a los hongos pueden crecer colonias de bacterias)
·         El ácido láctico conserva las estructuras fúngicas al crear, por decirlo de algún modo, una película que las protege  provocado por un cambio de gradiente osmótico entre el interior y el exterior de dicha estructura.
·         El azul de algodón tiene la capacidad de adherirse a las hifas y conidios de los hongos microscópicos (estructuras reproductoras)
                               


Material

ü  Portaobjeto.

ü  Cubreobjeto
ü  Azul de lactofenol.
ü  Cinta adhesiva.

ü  Pinzas.
ü  Muestra de hongos filamentosos.
Protocolo
1.       Cortaremos un trozo de cinta celo y con ayuda de las pinzas la pasaremos con cuidado por la colonia de hongos.
2.       A continuación, depositaremos el trozo de cinta adhesiva (con su cara adhesiva hacia arriba) sobre el porta.
3.       Añadiremos gotas de colorante hasta cubrirlo.
4.       Cubriremos la preparación con el cubreobjetos.
5.       Observaremos la preparación al microscopio a los objetivos de 10x y 40x.
6.       Identificaremos las diferentes estructuras fúngicas.

Separación de pigmentos vegetales


PRÁCTICA Nº 13                   SEPARACIÓN DE PIGMENTOS VEGETALES POR                                                               CROMATOGRAFÍA EN PAPEL.

Fundamento teórico
Los cloroplastos deben su color verde a un pigmento denominado clorofila. Sin embargo, lo que en realidad existe en los cloroplastos es una mezcla de pigmentos representados principalmente por dos tipos de clorofila (clorofila a y clorofila b), por β caroteno y por xantofila.

Todas estas sustancias presentan un grado diferente de solubilidad, lo cual permite su separación cuando una solución de la misma asciende por capilaridad por una tira de papel poroso (papel de filtro), ya que las más solubles se desplazarán a mayor velocidad, pues acompañarán fácilmente al disolvente a medida que éste va ascendiendo. De esta forma, al cabo de cierto tiempo, a lo largo del papel de filtro se irán situando los distintos pigmentos en forma de bandas coloreadas, tanto más desplazadas cuanto más solubles sean los pigmentos a que pertenecen y tanto más anchas cuanto mayor sea la abundancia de estos en la mezcla.

Material

ü  Mortero.
ü  Arena de cuarzo o sal gorda.

ü  Placa Petri.
ü  Papel de filtro.
ü  Matraz.

ü  Embudo de vidrio y embudo de papel.
ü  Alcohol de 96º
ü  Hojas de espinaca, perejil, hierbabuena, etc
.
Protocolo
1.      Extracción de pigmentos:

-        Colocar en un mortero trozos de hojas lavadas (quitando las nerviaciones más gruesas) junto con 50 o 60 cm3 de alcohol de 90º C y una cucharadita de arena. Triturar sin golpear hasta que el líquido adquiera una coloración verde intensa.






Filtrar, recogiendo el filtrado en un matraz. Se obtiene así una solución de pigmentos en alcohol.


                                                                                                                                                         

2.      Separación de los pigmentos:

-        La solución antes obtenida se vierte sobre una placa Petri.

-        Se coloca un papel de filtro doblado en ángulo sobre la solución(15 cm de ancho por 10 cm de alto) y se deja en reposo el tiempo necesario, para que los distintos pigmentos asciendan a su través.







3.      Observación de los resultados.
-     Transcurrido el tiempo, retiramos la tira de papel de .la placa petri y observamos las marcas dejadas por los distintos pigmentos y procedemos a identificarlos.


 Cuestiones

  1. ●Haz un dibujo del cromatograma obtenido, pon el nombre del pigmento que corresponde a cada banda coloreada, sabiendo que la velocidad de difusión de cada uno de ellos es la siguiente de mayor a menor: β caroteno, xantofila, clorofila a, clorofila b.


  1. ●¿Por qué empleamos alcohol para extraer la clorofila?
Porque el alcohol es un disolvente polar, aquel que tiene una alta constante dieléctrica, en decir, son capaces de disolver sustancias polares, al contrario que los disolventes apolares que disuelven sustancias apolares.

  1. ●¿Qué pigmentos son los más abundantes?¿Cuáles se disuelven mejor en el alcohol?
Clorofila a y b.
Clorofila b

  1. ●Si añadiésemos benceno a la solución alcohólica inicial, el benceno se teñiría de verde y la solución alcohólica quedaría de color amarillo naranja. ¿Qué nos indicaría esto?
El benceno es igual que el colesterol. No tiene afinidad por lo que no va a permitir que los pigmentos suban por el papel del filtro.





Observación de protozoarios en agua estancada


PRÁCTICA Nº 12
"OBSERVACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUA ESTANCADA"

Fundamento
Las charcas de agua dulce constituyen ecosistemas de enorme diversidad biológica, especialmente por la gran variedad de formas de vida microscópica. La observación al microscopio de pequeñas muestras de agua de estas charcas constituye un excelente ejercicio para descubrir esa gran variedad de vida normalmente oculta a nuestros ojos. Es esta gran biodiversidad la que dificulta el confeccionar una relación exhaustiva de los organismos microscópicos del agua, por lo que nos limitaremos a indicar cuáles son los más frecuentes y, por lo tanto, los más probables de encontrar en una muestra:
a) - Algas microscópicas: engloban una gran variedad de clases, familias y géneros. En general están muy pigmentadas por clorofila, lo que permite su observación sin necesidad de tinción. Pueden observarse los siguientes grupos:
 - Diatomeas: son algas unicelulares de cuerpo protoplasmático con núcleo y cromatóforos envueltos en un caparazón silíceo formado por dos valvas, como una caja, denominado frústulo. En las aguas dulces forman un sedimento parduzco característico denominado "tierra de diatomeas".
- Desmidiáceas: son algas unicelulares con cloroplastos desarrollados que le dan un color verde brillante. Las células, por lo general, están divididas en dos mitades por un surco más o menos profundo, cada una de las cuales es la imagen especular de la otra.
- Clorofíceas: son algas que contienen clorofila como principal pigmento, por lo tanto tienen una pigmentación verde. Pueden ser unicelulares o bien filamentosas, pudiendo ser estos filamentos ramificados o no.
 - Cianofíceas: se caracterizan por el color verde azulado propio de la cianina y distinto del verde claro de la clorofila. Son muy abundantes sobre las rocas húmedas, donde suelen formar masas viscosas. Al observar muestras de agua estancada, encontraremos diversas formas de vida microscópica.
b) - Protozoos: son pequeños organismos unicelulares de formas muy diversas, por lo general muy móviles debido a la presencia de cilios o flagelos. En algunas ocasiones aparecen reunidos semejando una colonia, pero siempre son unicelulares, nunca pluricelulares. Entre los protozoos más frecuentes en el agua dulce se encuentran los siguientes:
- Ciliados: unicelulares que presentan numerosos cilios sobre su superficie.
- Flagelados: son muy móviles gracias a la presencia de uno o dos flagelos. Con frecuencia tienen una coloración verdosa (fitoflagelados).
- Rizópodos: protozoos que emiten pseudópodos para la locomoción o la alimentación.
Algunas familias tienen exoesqueleto (heliozoos y radiolarios).
c) - Pequeños metazoos de vida acuática: en el agua dulce aparecen multitud de pequeños organismos metazoos, muchos netamente acuáticos y otros habitantes ocasionales del agua. Los más frecuentes son:
- Rotíferos: pequeños animales acelomados que presentan un continuo movimiento de su estómago masticador o mastax, bien observable al microscopio. Son muy abundantes.
- Gusanos: muy variados y de gran tamaño. Los más frecuentes son nemátodos, planarias y algunos anélidos.
- Crustáceos: suelen estar presentes algunos pequeño bivalvos como los ostrácodos, pero lo más abundante son los copépodos y los dáphnidos. Los primeros muestran un cuerpo segmentado, con cabeza, tórax y abdomen y los segundos, poco segmentados, permiten observar a través de su caparazón, el funcionamiento del corazón y el movimiento del tubo digestivo.
- Insectos: están representadas multitud de formas larvarias y, en menor medida, adultos que viven en un entorno acuático.

Objetivos
- Identificar la presencia de protozoarios en aguas dulces estancadas.
- Reconocer algunos géneros de protozoarios en las muestras a analizar.

Materiales
§  Microscopio
§  porta-objetos
§  Cubre-objetos
§  Cuentagotas

Protocolo
1. De una muestra de agua estancada extraer con un cuentagotas una muestra para realizar la preparación.
2. Depositar una gota de la muestra sobre el porta-objetos, cubrirla con lámina cubre-objetos, evitando que queden burbujas de aire.
3. Observar al microscopio a 40x y 100x. 
4. Identificar los organismos protozoarios.
Resultados y Conclusiones
Indica cuáles son los organismos que ves (en la hoja anexa tienes algunos ejemplares que te ayudarán en el reconocimiento), describe como es su forma y movimiento y si se observan estructuras celulares, y por último  haz un dibujo de lo que observas.
Puedes ayudarte de los siguientes dibujos para la identificación de los organismos que observes.



1.      Diatomea
Resultado de imagen de diatomea agua estancada
Tiene una aspecto alargado, carecen de flagelo.
2.      Lacrymaria
Imagen relacionada
Organismo ciliado. Su nombre significa lágrima de cisne
3.      Chlamydomonas
Resultado de imagen de Chlamydomonas agua estancada
Organismo flagelado con un único cloroplasto.
4.      Platelminto
Resultado de imagen de platelminto agua estancada
Es un organismo alargado y ancho que se deslizan por el fondo.